技術(shù)專欄

            淺析免疫共沉淀(Co-IP)原理和詳細(xì)實(shí)驗(yàn)步驟教程
            供稿:技術(shù)部發(fā)布時(shí)間:2022-06-06瀏覽量:7557次

            一、原理:免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation)是以抗體和抗原之間的專一性作用為基礎(chǔ)的用于研究蛋白質(zhì)相互作用的經(jīng)典方法。是確定兩種蛋白質(zhì)在完整細(xì)胞內(nèi)生理性相互作用的有效方法。

            其原理是:當(dāng)細(xì)胞在非變性條件下被裂解時(shí),完整細(xì)胞內(nèi)存在的許多蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)間的相互作用被保留了下來(lái)。如果用蛋白質(zhì)X的抗體免疫沉淀X,那么與X在體內(nèi)結(jié)合的蛋白質(zhì)Y也能沉淀下來(lái)。

            目前多用精制的prorein A預(yù)先結(jié)合固化在argarose的beads上,使之與含有抗原的溶液及抗體反應(yīng)后,beads上的prorein A就能吸附抗原達(dá)到精制的目的。這種方法常用于測(cè)定兩種目標(biāo)蛋白質(zhì)是否在體內(nèi)結(jié)合;也可用于確定一種特定蛋白質(zhì)的新的作用搭檔。

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            其優(yōu)點(diǎn)為:

            (1)相互作用的蛋白質(zhì)都是經(jīng)翻譯后修飾的,處于天然狀態(tài);

            (2)蛋白的相互作用是在自然狀態(tài)下進(jìn)行的,可以避免人為的影響;

            (3)可以分離得到天然狀態(tài)的相互作用蛋白復(fù)合物。

            缺點(diǎn)為:

            (1)可能檢測(cè)不到低親和力和瞬間的蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用;

            (2)兩種蛋白質(zhì)的結(jié)合可能不是直接結(jié)合,而可能有第三者在中間起橋梁作用;

            (3)必須在實(shí)驗(yàn)前預(yù)測(cè)目的蛋白是什么,以選擇最后檢測(cè)的抗體,所以,若預(yù)測(cè)不正確,實(shí)驗(yàn)就得不到結(jié)果,方法本身具有冒險(xiǎn)性。

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            二、準(zhǔn)備工作:

            預(yù)冷PBS,RIPA Buffer,細(xì)胞刮子(用保鮮膜包好后,埋冰下),離心機(jī)

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            1. 用預(yù)冷的PBS洗滌細(xì)胞兩次,最后一次吸干PBS;

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            2. 加入預(yù)冷的RIPA Buffer(1ml/107個(gè)細(xì)胞、10cm培養(yǎng)皿或150cm2培養(yǎng)瓶,0.5ml/5×106個(gè)細(xì)胞、6cm培養(yǎng)皿、75cm2培養(yǎng)瓶)

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            3. 用預(yù)冷的細(xì)胞刮子將細(xì)胞從培養(yǎng)皿或培養(yǎng)瓶上刮下,把懸液轉(zhuǎn)到1.5EP管中,4℃,緩慢晃動(dòng)15min(EP管插冰上,置水平搖床上)

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            4. 4℃,14000g離心15min,立即將上清液轉(zhuǎn)移到一個(gè)新的離心管中

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            5. 準(zhǔn)備Protein A agarose,用PBS 洗兩遍珠子,然后用PBS配制成50%濃度,建議剪掉移液器吸頭,尖頭部分,避免在涉及瓊脂糖珠的操作中破壞瓊脂糖珠

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            6. 每1ml總蛋白中加入100μl Protein A瓊脂糖珠(50%),4℃搖晃10min(EP管插冰上,置水平搖床上),以去除非特異性雜蛋白,降低背景

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            7. 4℃,14000g離心15min,將上清轉(zhuǎn)移到一個(gè)新的離心管中,去除Protein A珠子

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            8. (Bradford 法)做蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線,測(cè)定蛋白濃度,測(cè)前將總蛋白至少稀釋1:10倍以上,以減少細(xì)胞裂解液中去垢劑的影響(定量,分裝后,可以在-20℃保存一個(gè)月)

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            9. 用PBS將總蛋白稀釋到約1 μg/μl,以降低裂解液中去垢劑的濃度,如果誘餌蛋白在細(xì)胞中含量較低,則總蛋白濃度應(yīng)該稍高(如10 μg/μl)

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            10. 加入一定體積的兔抗到500μl總蛋白中,抗體的稀釋比例因誘餌蛋白在不同細(xì)胞系中的多少而異

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            11. 4℃緩慢搖動(dòng)抗原抗體混合物過(guò)夜或室溫2h,激酶或磷酸酯酶活性分析建議用2 h室溫孵育

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            12. 加入100μl Protein A瓊脂糖珠來(lái)捕捉抗原抗體復(fù)合物,4℃緩慢搖動(dòng)抗原抗體混合物過(guò)夜或室溫1h,如果所用抗體為鼠抗或雞抗,建議加2 μl"過(guò)渡抗體"(兔抗鼠IgG,兔抗雞IgG)

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            13. 14000rpm瞬時(shí)離心5s,收集瓊脂糖珠-抗原抗體復(fù)合物,去上清,用預(yù)冷的RIPA buffer洗3遍,800μl/遍,RIPA buffer有時(shí)候會(huì)破壞瓊脂糖珠-抗原抗體復(fù)合物內(nèi)部的結(jié)合,可以使用PBS

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            14. 用60μl 2×上樣緩沖液將瓊脂糖珠-抗原抗體復(fù)合物懸起,輕輕混勻,緩沖液的量依據(jù)上樣多少的需要而定(60 μl足夠上三道)

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            15. 將上樣樣品煮5min,以游離抗原,抗體,珠子,離心,將上清電泳,收集剩余瓊脂糖珠,上清也可以暫時(shí)凍-20℃,留待以后電泳,電泳前應(yīng)再次煮5min變性。

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            RIPA Buffer配制:

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            RIPA蛋白酶抑制劑

            成分 配制方法

            苯甲基磺酰氟

            (PMSF)

            用異丙醇配制成200mM的儲(chǔ)存液,室溫保存
            EDTA 鈣螯合劑;用H2O配制成100mM的儲(chǔ)存液,PH 7.4

            亮抑酶肽

            (Leupeptin)

            用H2O配制成1mg/ml的儲(chǔ)存液,分裝,-20℃保存

            抑蛋白酶肽

            (Aprotinin)

            用H2O配制成1mg/ml的儲(chǔ)存液,分裝,-20℃保存

            胃蛋白酶抑制劑

            (Pepstatin)

            用甲醇配制成1mg/ml的儲(chǔ)存液,分裝,-20℃保存
            激活的Na3VO4 用H2O配制成200mM的儲(chǔ)存液
            NaF 200mM的儲(chǔ)存液,室溫保存
            RIPA磷酸 (酯)酶抑制劑
            注意:在準(zhǔn)備做磷酸(酯)酶實(shí)驗(yàn)的時(shí)候,不加磷酸酯酶抑制劑。

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            工作液配制:

            配制100ml的modified RIPA buffe:

            1. 稱取790mg 的Tris-Base,加到75ml 去離子水中,加入900mg的NaCl,攪拌,直到全部溶解,用HCl調(diào)節(jié)PH值到7.4

            2. 加10 ml 10%的NP-40

            3. 加2.5 ml 10%的去氧膽酸鈉,攪拌,直到溶液澄清

            4. 加1 ml 100mM的EDTA,用量筒定容到100ml,2-8℃保存

            5. 理論上,蛋白酶和磷酸酯酶抑制劑應(yīng)該在使用當(dāng)天同時(shí)加入(抑蛋白酶肽,亮抑酶肽,胃蛋白酶抑制劑各100 μl; PMSF, Na3VO4, NaF各500 μl),但是PMSF在水溶液中很不穩(wěn)定,30分鐘就會(huì)降解一半,所以PMSF應(yīng)該在使用前現(xiàn)加,其他抑制劑成分可以在水溶液中穩(wěn)定5天。

            RIPA蛋白酶抑制劑各種成分在工作液中的終濃度:

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            三、實(shí)驗(yàn)流程為:

            (1)轉(zhuǎn)染后24-48 h 可收獲細(xì)胞,加入適量細(xì)胞裂解緩沖液(含蛋白酶抑制劑),冰上裂解30min, 細(xì)胞裂解液于4°C,最大轉(zhuǎn)速離心30 min后取上清;

            (2)取少量裂解液以備Western blot分析,剩余裂解液加1μg相應(yīng)的抗體加入到細(xì)胞裂解液,4°C緩慢搖晃孵育過(guò)夜;

            (3)取10μl protein A 瓊脂糖珠,用適量裂解緩沖液洗3 次,每次3,000 rpm離心3 min;

            (4)將預(yù)處理過(guò)的10μl protein A 瓊脂糖珠加入到和抗體孵育過(guò)夜的細(xì)胞裂解液中4°C緩慢搖晃孵育2-4h,使抗體與protein A瓊脂糖珠偶連;

            (5)免疫沉淀反應(yīng)后,在4°C 以3,000 rpm 速度離心3 min,將瓊脂糖珠離心至管底;將上清小心吸去,瓊脂糖珠用1ml裂解緩沖液洗3-4次;最后加入15μl的2×SDS 上樣緩沖液,沸水煮5分鐘;

            (6)SDS-PAGE, Western blotting或質(zhì)譜儀分析。通過(guò)免疫共沉淀確定結(jié)合蛋白

            1.用磷酸鹽緩沖液洗30塊10 cm培養(yǎng)板上的適宜細(xì)胞。刮去每塊板上的細(xì)胞到1 ml冰冷的EBC裂解緩沖液中。

            2.將每毫升細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)移到微量離心管中,在微量離心機(jī)上4℃以最大速度離心15 min。

            3.收集上清(約30 ml)并加入30μg的適當(dāng)抗體,4℃搖動(dòng)免疫沉淀物1 h。

            4.加入0.9 ml的蛋白質(zhì)A-Sepharose 懸液,4℃搖動(dòng)免疫沉淀物30 min。

            5.用含900 mmol/L NaCl的NETN洗蛋白A-Sepharose混合物,再重復(fù)洗5次。最后,用NETN洗一次。

            6.吸出混合物的液體部分。加入800μl的1×SDS膠加樣緩沖液到球珠中,煮沸4 min。

            7.將樣品加入到大孔的不連續(xù)SDS-PAGE梯度膠中,在10 mA的恒定電流下電泳過(guò)夜。

            8.通過(guò)考馬斯藍(lán)染色觀察蛋白質(zhì)泳帶。

            9.從膠上切下目標(biāo)帶,將其放到微量離心管中,用1ml 50%乙腈洗兩次,每次3 min。

            10. 用胰蛋白酶消化膠中的蛋白質(zhì),再將肽電洗脫。

            11. 通過(guò)窄孔高效液相色譜分離肽。將收集的肽在ABI 477A或494A機(jī)器上進(jìn)行自動(dòng)Edman降解測(cè)序。

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            四、注意的問(wèn)題:

            (1)細(xì)胞裂解采用溫和的裂解條件,不能破壞細(xì)胞內(nèi)存在的所有蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用,多采用非離子變性劑(NP40 或Triton X-100)。每種細(xì)胞的裂解條件是不一樣的,通過(guò)經(jīng)驗(yàn)確定。不能用高濃度的變性劑(0.2%SDS),細(xì)胞裂解液中要加各種酶抑制劑,如商品化的 cocktailer。

            (2)使用明確的抗體,可以將幾種抗體共同使用

            (3)使用對(duì)照抗體:

            單克隆抗體:正常小鼠的IgG或另一類單抗

            兔多克隆抗體:正常兔IgG

            在免疫共沉淀實(shí)驗(yàn)中要保證實(shí)驗(yàn)結(jié)果的真實(shí)性,應(yīng)注意以下幾點(diǎn):

            (1) 確保共沉淀的蛋白是由所加入的抗體沉淀得到的,而并非外源非特異蛋白,單克隆抗體的使用有助于避免污染的發(fā)生;

            (2) 要確??贵w的特異性,即在不表達(dá)抗原的細(xì)胞溶解物中添加抗體后不會(huì)引起共沉淀;

            (3) 確定蛋白間的相互作用是發(fā)生在細(xì)胞中,而不是由于細(xì)胞的溶解才發(fā)生的,這需要進(jìn)行蛋白質(zhì)的定位來(lái)確定。

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            ?CoIP 的原理,其實(shí)和 WB 一樣,就是抗體抗原結(jié)合的免疫反應(yīng),只要你會(huì) WB,就能輕松理解 IP 和 CoIP 的原理。簡(jiǎn)單來(lái)說(shuō),如果蛋白 B 和蛋白 C 結(jié)合的話,那么用抗體去結(jié)合蛋白 B 的時(shí)候,蛋白 C 就能被拉下來(lái)。
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            抗體的結(jié)構(gòu)是一個(gè) Y 字形,兩頭是 Fab 用于識(shí)別抗原,尾巴是 Fc 區(qū)域,這個(gè) Fc 區(qū)域就能結(jié)合 Protein A 或 G。自從磁珠出現(xiàn)之后,CoIP 的操作就變得更加簡(jiǎn)單了,只需要用包被 Protein A 或 G 的磁珠先和抗體結(jié)合,然后用抗體磁珠復(fù)合體去結(jié)合蛋白 B,之后再用 PAGE 膠分離,用 WB 檢測(cè)就 OK 了。
            Protein A 和G親和力對(duì)比
            蛋白A和蛋白G對(duì)于不同種屬和不同亞型的抗體結(jié)合能力差異如下表所示,蛋白A對(duì)兔來(lái)源抗體的親和力較高,蛋白G對(duì)于小鼠等部分哺乳動(dòng)物抗體的親和力較高。

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            關(guān)于CoIP 的對(duì)照組怎么設(shè)置,可以在Openi?這個(gè)網(wǎng)站中直接搜索「CoIP」論文里的圖片,看看前輩們?cè)趺醋龅木椭涝撊绾卧O(shè)置對(duì)照了

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            接下來(lái)就按照實(shí)驗(yàn)既定流程走就行了,最后實(shí)驗(yàn)結(jié)果我們用幾篇文章的結(jié)果來(lái)舉例:

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            有了這樣的結(jié)果,文章檔次一下子就上去了圖片。

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